- 相關(guān)推薦
人組蛋白去乙;11的克隆表達與生物信息學(xué)分析
組蛋白去乙;(histone deacetylase,HDAC)是一類蛋白酶,對染色體的結(jié)構(gòu)修飾和基因表達調(diào)控發(fā)揮著重要的作用。一般情況下,組蛋白的乙酰化有利于DNA與組蛋白八聚體的解離,核小體結(jié)構(gòu)松弛,從而使各種轉(zhuǎn)錄因子和協(xié)同轉(zhuǎn)錄因子能與DNA結(jié)合位點特異性結(jié)合,激活基因的轉(zhuǎn)錄。
摘要:為深入研究人組蛋白去乙酰化酶11(HDAC11)與其他家族成員的差異,對HDAC11進行克隆表達和生物信息學(xué)分析。首先利用PCR 擴增目的片段,將其克隆到原核表達載體pGEX-6P-1中,重組質(zhì)粒pGEX-6P-1-hdac11在大腸桿菌BL21(DE3)中經(jīng)IPTG誘導(dǎo)表達,表達產(chǎn)物通過SDS-PAGE 電泳進行鑒定,結(jié)果表明HDAC11在大腸桿菌中有表達,但主要以包涵體的形式存在。利用生物信息學(xué)軟件對HDAC11的氨基酸序列、理化性質(zhì)、二級結(jié)構(gòu)等進行分析,結(jié)果表明HDAC11為穩(wěn)定中性蛋白,α-螺旋和無規(guī)卷曲為其主要二級結(jié)構(gòu)元件,有多個磷酸化位點。
關(guān)鍵詞:組蛋白去乙;11 表達 生物信息學(xué) 克隆
乙;墙M蛋白共價修飾的一種方式。可逆的組蛋白乙;揎棸l(fā)生在核心組蛋白N端的賴氨酸殘基上,分別由組蛋白乙;D(zhuǎn)移酶(HAT)和組蛋白去乙;(HDACs)催化完成。HAT提高乙;剑喾吹腍DACs則降低乙;絒1]。HDACs是一個大家族,在哺乳細胞中已發(fā)現(xiàn)18個成員,根據(jù)其與酵母蛋白同源性被分為四類[2]。Ⅰ類HDACs包括HDAC1-3和HDAC8,與酵母蛋白Rpd3同源, 主要存在于細胞核中,在各種組織細胞中都有表達[3]。Ⅱ類HDACs包括HDAC4-7, HDAC9和HDAC10,與酵母蛋白Hda1 同源,穿梭于細胞質(zhì)和細胞核之間,只在部分組織中有表達[4]。Ⅲ類HDACs與酵母蛋白Sir2同源,被稱作Sirtuins。成員有7個:SIRTl-SIRT7[5], 在細胞核和細胞質(zhì)中都存在。HDAC11是Ⅳ類HDAC的唯一成員[6]。Ⅰ類、Ⅱ類和Ⅳ類HDAC被稱作經(jīng)典HDACs,經(jīng)典HDACs和Sirtuins催化機制不同:經(jīng)典HDACs為鋅離子依賴性蛋白[7],Sirtuins為尼克酰胺腺苷酸(NAD)依賴性蛋白[8]。除了組蛋白外HDACs也能作用于非組蛋白,比如轉(zhuǎn)錄因子[9],從而間接影響這些轉(zhuǎn)錄因子所調(diào)控的基因的表達,因此HDACs在調(diào)控多種細胞進程中扮演了重要角色。相關(guān)研究表明,HDACs與癌癥的發(fā)生有關(guān)[10]。目前,伏立諾他等HDAC抑制劑(HDACi)作為抗腫瘤藥物進入臨床并表現(xiàn)出了良好的治療效果,但是現(xiàn)在大部分的HDACi為廣譜型抑制劑, 廣譜HDACi可能會引起多種副作用,比如凝血障礙、心律失常等[11],這主要是因為HDACs存在多種亞型,因此針對亞型選擇性的HDACi已經(jīng)成為現(xiàn)在研究的一個熱點。HDAC11是HDAC家族發(fā)現(xiàn)最晚的一個成員,也是研究最少的一個成員,本文通過克隆表達HDAC11并對HDAC11的序列,二級結(jié)構(gòu)等進行預(yù)測分析希望對以后HDAC11的研究工作提供幫助。
一、材料與方法
1、材料
HDAC11序列(登錄號:NM_024827.3)和引物交由生工生物合成,載體pGEX-6P-1為實驗室保存,大腸桿菌菌株DH(5α)和BL21(DE3)感受態(tài)細胞購自北京全式金生物公司。EcoRⅠ,BamHⅠ和T4連接酶購自fermentas, DNA marker和Protein Marker購自全式金,質(zhì)粒小提試劑盒和膠回收試劑盒購自萊科百奧。
2、方法
2.1 hdac11基因的擴增
利用primer 5.0設(shè)計引物。引物為正向-CG GGATCC ATGCTACACACAACCCAGCTGT ACC,反向-CG GAATTC TCAGGGCACTGCAGGGGGAA,引物交由生工生物合成。以合成的HDAC11序列為模版進行PCR擴增,參數(shù)為:94℃預(yù)變性10min; 94℃ 30s, 60℃ 30s, 72℃ 1.5min, 30個循環(huán);72℃終延伸10min。擴增產(chǎn)物用1%瓊脂糖凝膠電泳回收。
2.2 重組質(zhì)粒的構(gòu)建與鑒定
將回收的目的片段與pGEX-6P-1載體分別用EcoRⅠ和BamHⅠ雙酶切,并將酶切產(chǎn)物按一定比例16℃連接5h。將連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化到大腸桿菌DH(5α)感受態(tài)細胞,氨芐青霉素篩選陽性克隆,對陽性克隆做雙酶切鑒定和測序鑒定。
2.3 重組蛋白的表達
將測序正確的重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)化到大腸桿菌BL21(DE3)感受態(tài)細胞中。挑取單克隆于含氨芐青霉素的LB培養(yǎng)基中培養(yǎng),OD600=0.6時,加入IPTG使其終濃度為0.1 mM/L,16℃誘導(dǎo)表達12h,離心收集菌體。用PBS重懸菌體沉淀,超聲破碎后高速離心,取上清和沉淀制樣跑膠分析目的蛋白的表達形式。
2.4 HDAC11的生物信息學(xué)分析
利用ProtParam和Protscale對HDAC11的氨基酸序列及理化性質(zhì)進行分析,blast在線分析HDAC11的同源性,SOPMA對其二級結(jié)構(gòu)進行預(yù)測,NetPhos和SUMOplot對其進行翻譯后修飾預(yù)測。
二、結(jié)果與分析
1、目的蛋白的克隆表達
1.1 重組質(zhì)粒的構(gòu)建及鑒定
構(gòu)建的重組質(zhì)粒用EcoRⅠ和BamHⅠ做雙酶切鑒定,獲得4900bp的載體片段和約1000bp的目的基因片段,結(jié)果表明成功構(gòu)建重組質(zhì)粒。
1. Trans 15K DNA Marker 2-4. 雙酶切產(chǎn)物
圖1 重組質(zhì)粒的雙酶切鑒定
1.2重組蛋白的表達
將重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)入大腸桿菌BL21( DE3)中,經(jīng)IPTG 誘導(dǎo)后收集菌體, SDS-PAGE 檢測結(jié)果顯示, 加入IPTG誘導(dǎo)后, 轉(zhuǎn)入重組質(zhì)粒的菌株總蛋白提取物中出現(xiàn)一條分子量約為65kD 的蛋白條帶, 與重組HDAC11蛋白大小相符, 表明重組表達載體經(jīng)IPTG 誘導(dǎo)后目的蛋白得到表達。但HDAC11蛋白主要以包涵體形式存在。
1. 菌體總蛋白 2. 裂解后上清 3.裂解后沉淀 4. Protein RulerⅠ
圖2 表達蛋白的SDS-PAGE分析
2、HDAC11的生物信息學(xué)分析
2.1 HDAC11的氨基酸序列及理化性質(zhì)分析
ProtParam分析表明HDAC11(UniProtKB: Q96DB2)共含有347個氨基酸殘基,含量較高的是亮氨酸(10.1%)、甘氨酸(8.4%)、纈氨酸(7.8%)和精氨酸(7.8%),含量較少的氨基酸有半胱氨酸(0.6%)、色氨酸(1.4%)等。將人HDAC11的氨基酸序列與小鼠(UniProtKB/Swiss-Prot: Q91WA3.1),食蟹猴(UniProtKB/Swiss-Prot: Q9GKU5.2)的HDAC11序列進行比較發(fā)現(xiàn)同源性均達到90%以上。將人源HDAC11與人源HDAC1-HDAC10蛋白進行同源性比較,結(jié)果表明HDAC11與其他HDAC蛋白的同源性均不高,其與HDAC1具有31%的最高同源性,與HDAC5的同源性最低,為21%。HDAC11的分子式為C1763H2786N490O501S10,分子量為39183,酸性氨基酸有44個,堿性氨基酸有44個,理論等電點7.17為中性蛋白。在溶液中的不穩(wěn)定指數(shù)為39.1,根據(jù)蛋白質(zhì)的不穩(wěn)定指數(shù)在40以下為穩(wěn)定蛋白的標(biāo)準(zhǔn)推測該蛋白為穩(wěn)定蛋白。脂肪系數(shù)為96.05。
圖3 HDAC11的氨基酸組成分析
2.2 HDAC11的二級結(jié)構(gòu)預(yù)測
利用SOPMA在線軟件對HDAC11蛋白的二級結(jié)構(gòu)進行預(yù)測,結(jié)果表明:該蛋白的二級結(jié)構(gòu)中α-螺旋的比例最高,達到37.75%,無規(guī)卷曲次之,為30.26%,延伸鏈和β-轉(zhuǎn)角所占比例分別為19.88%和12.10%。因此α-螺旋和無規(guī)卷曲是該蛋白的主要二級結(jié)構(gòu)元件。含量最高的α-螺旋主要分布于氨基酸殘基的43-66、76-92、154-170、232-247四個區(qū)域,無規(guī)卷曲、延伸鏈和β-轉(zhuǎn)角則不均勻地分布于整個蛋白質(zhì)多肽鏈中。
h--α-螺旋 e--延伸鏈 t--β-轉(zhuǎn)角 c--無規(guī)卷曲
最長豎線:α-螺旋 中長豎線:延伸鏈
長豎線:β-轉(zhuǎn)角 最短豎線:無規(guī)卷曲
圖4 HDAC11的二級結(jié)構(gòu)分析
2.3 HDAC11的翻譯后修飾預(yù)測
利用NetPhos對HDAC11蛋白進行磷酸化修飾預(yù)測,結(jié)果發(fā)現(xiàn)該蛋白擁有9個絲氨酸,2個蘇氨酸和1個酪氨酸共12個潛在的磷酸化位點。利用SUMOplot對其進行SUMO化修飾預(yù)測,結(jié)果表明HDAC11有兩個評分較高的修飾位點,分別為K280和K50。
圖5 HDAC11的磷酸化位點分析
圖6 HDAC11的SUMO化位點分析
三、討論
本研究將hdac11基因構(gòu)建到原核表達載體pGEX-6P-1中,轉(zhuǎn)化入大腸桿菌BL21(DE3)中進行表達,目的蛋白有表達,但是以包涵體的形式存在。外源基因在大腸桿菌中的高表達常常導(dǎo)致形成無活性的包涵體,目前減少包涵體形成主要有兩種策略:① 降低蛋白合成速度比如降低誘導(dǎo)劑濃度和誘導(dǎo)溫度[12];②加入促進可溶性表達的生長添加劑[13]。對于已經(jīng)形成包涵體的蛋白可通過將包涵體蛋白體外復(fù)性得到生物活性蛋白。另外本文利用生物信息學(xué)軟件如ProtParam、ProtScale、SOPMA等對HDAC11的序列,理化性質(zhì)、二級結(jié)構(gòu)等進行了分析預(yù)測。對HDAC11的氨基酸和理化性質(zhì)分析可知,HDAC11在人、小鼠和食蟹猴中的序列非常保守,而HDAC11與其他家族成員的同源性非常低,相比較而言HDAC11更接近于Ⅰ類HDACs。對HDAC11的二級結(jié)構(gòu)預(yù)測后發(fā)現(xiàn)無規(guī)卷曲和α-螺旋的比例較高,無規(guī)卷曲結(jié)構(gòu)比較松散并隨環(huán)境而改變,常構(gòu)成酶活性部位和蛋白質(zhì)特異的功能部位。另外HDAC11可能存在12個磷酸化位點,已有多篇文獻報道HDAC1-HDAC10的10個蛋白均含有磷酸化位點,比如HDAC1的S421[14]、HDAC6的S1035[15]、HDAC7的T286[16]、HDAC8的S39[17]等,這些修飾可能會影響酶的活性或蛋白的定位。Ⅱa類HDACs在細胞內(nèi)的定位主要是由核的輸入輸出信號和14-3-3蛋白調(diào)控,HDAC4、5、7、9含有三個保守的14-3-3結(jié)合位點,結(jié)合14-3-3后會以一種磷酸化依賴的方式將HDACs留在細胞質(zhì)中[17]。比如HDAC4的S350被磷酸化后與14-3-3的結(jié)合力增強[18],HDAC5的S259和S498被磷酸化后會促進蛋白從細胞核輸出到細胞質(zhì)[19],因此對于Ⅱa類HDACs來說磷酸化影響了蛋白的定位。HDAC1的S421和S423被磷酸化后會促進酶活性及與NuRD及SIN3復(fù)合物的相互作用[14],而HDAC8的S39被磷酸化后會降低酶活性[17],對于HDAC11來說,磷酸化可能影響了它的酶活性。另外HDAC11還含有潛在的SUMO化修飾位點,對于HDACs家族而言,已有文獻報道HDAC1、3、4、6和9有SUMO化修飾[20,21],HDAC1的K444和K476被修飾后酶的活性增強[21],SUMO化可能也影響了HDAC11的活性。
四、結(jié)論
本研究一方面將該基因構(gòu)建到原核表達載體pGEX-6P-1中進行目的蛋白表達, 結(jié)果以包涵體形式表達,另一方面利用生物信息學(xué)軟件分析了該蛋白的氨基酸序列、理化性質(zhì)、二級結(jié)構(gòu)、磷酸化位點等,為進一步了解該蛋白的結(jié)構(gòu)與功能以及組蛋白去乙;讣易宄蓡T之間的差異打下基礎(chǔ)。
參考文獻:
[1]Murr R. Interplay between different epigenetic modifications and mechanisms. Adv Genet, 2010,70:101-41.
[2]Xu WS, Parmigiani RB, Marks PA. Histone deacetylase inhibitors: molecular mechanisms of action. Oncogene, 2007,26:5541-52.
[3]Gregoretti IV, Lee YM, Goodson HV. Molecular evolution of the histone deacetylase family: functional implications of phylogeneticanalysis. J Mol Biol ,2004,338:17-31.
[4]Marks PA, Dokmanovic M. Histone deacetylase inhibitors:discovery and development as anticancer agents. Exp Opin Invest Drugs ,2005,14:1497-511.
[5]Blander G,Guarente L,The Sir2 family of protein deacetylases [J].Annu Rev Biochem,2004,73:417-435.
[6]Mottet D, Castronovo V. Histone deacetylases: target enzymes for cancer therapy. Clin Exp Metastasis ,2008,25:183-9.
[7]Codd R, Braich N, Liu J, et al, Pakchung AA. Zn(II)-dependent histone deacetylase inhibitors: suberoylanilide hydroxamic acid and trichostatin A. Int J Biochem Cell Biol, 2009,41:736-9.
[8]Neugebauer RC, Sippl W, Jung M. Inhibitors of NAD+ dependent histone deacetylases(sirtuins). Curr Pharm Des ,2008,14:562-73.
[9]Yang XJ, Seto E. The Rpd3/Hda1 family of lysine deacetylases: from bacteria and yeast to mice and men. Nat Rev Mol Cell Biol, 2008,9:206-18.
[10]Yang XJ, Gregoire S . Class II histone deacetylases: from sequence to function, regulation, and clinical implication. Mol Cell Biol, 2005,25: 2873-2884
[11]O. Bruserud, C. Stapnes, E. Ersvaer, B.et al. Ryningen, Histone deacetylase inhibitors in cancer treatment: a review of the clinical toxicity and the modulation of gene expression in cancer cell. Curr. Pharm. Biotechnol, 2007,8:388-400.
[12]Xie Y, Wet laufer D B .Control of aggregation in protein refolding : the temperature leap tactic .Protein Sci , 1996 , 5 (3):517-523
[13]Georgious G , Valax P .Expression of correctly folded proteins in E .coli .Curr Opin Biot echnol , 1996 , 7 (2):190-197
[14]Pflum MK, Tong JK, Lane WS,et al.Histone deacetylase 1 phosphorylation promotes enzymatic activity and complex formation.J Biol Chem. 2001,?276(50):47733-41.
[15]Bian Y, Song C, Cheng K,et al.An enzyme assisted RP-RPLC approach for in-depth analysis of human liver phosphoproteome.J Proteomics, 2014?,96:253-62.
[16]Dephoure N, Zhou C, Villén J,?et al.A quantitative atlas of mitotic phosphorylation.Proc Natl Acad Sci U S A, 2008, 105(31): 10762-7.
[17]Somoza JR, Skene RJ, Katz BA,?et al.Structural snapshots of human HDAC8 provide insights into the class I histone deacetylases. Structure,2004,12(7):1325-34
[18]Wang AH, Kruhlak MJ, Wu J,?et al. Regulation of histone deacetylase 4 by binding of 14-3-3 proteins.Mol Cell Biol, 2000, 20(18): 6904-12
[19]McKinsey TA, Zhang CL, Olson EN.Activation of the myocyte enhancer factor-2 transcription factor by calcium/ calmodulin- dependent protein kinase-stimulated binding of 14-3-3 to histone deacetylase 5.Proc Natl Acad Sci U S A,2000,97(26):14400-
[20]David G, Neptune MA, DePinho RA. SUMO-1 modification of histone deacetylase 1 (HDAC1) modulates its biological activities.J Biol Chem. 2002,277(26):23658-63.
[21]Petrie K, Guidez F, Howell L,et al. The histone deacetylase 9 gene encodes multiple protein isoforms.J Biol Chem, 2003, 278(18): 16059-72.
【人組蛋白去乙酰化酶11的克隆表達與生物信息學(xué)分析】相關(guān)文章:
酶促反應(yīng)對化學(xué)平衡的影響分析03-25
Megalin基因片段(3189-4169)的克隆及其表達03-20
內(nèi)皮脂肪酶與冠心病的相關(guān)性分析03-12
克隆人的發(fā)展方向及思考與感悟11-27
血管性血友病因子裂解酶抗原及活性與年齡及性別的關(guān)系分析03-08
關(guān)于人的發(fā)展的理性思考與誤區(qū)分析03-28